在小鼠试验中，AAV5及AAV6是感染肺部的理想选择。

首先我们可以使用局部注射（针对目标器官原位注射），选择正确的AAV血清型，其次还可以使用特异性启动子来表达外源基因，还可以使用Dio系统在特定脏器中表达。

AAV腺相关病毒感染心脏时血清型如何选择？

腺相关病毒（AAV）感染肾脏时哪些血清型效果好？

由于AAV的基因组是单链DNA，进入细胞后需经过由单链变成双链的过程才能开始转录翻译。体外培养的细胞体系中如果没有辅助病毒或者辅助因子的情况下，这种DNA单链转变成DNA双链的过程非常缓慢，所以目的基因表达滞后。而AAV注射进动物体内之后，靶器官组织里的各种辅助因子相对丰富，有助于AAV在体内快速表达，表达水平和持续时间更加稳定。

慢病毒感染后为什么细胞中出现大量黑点，并影响细胞生长?

AAV/Cas9载体的实现就是首先把 Cas9的序列重组进 AAV 的基因组内，而 AAV 将 Cas9的序列送到动物体内特定的组织里，在病毒基因复制过程中，从何实现 Cas9的基因敲除。

目的细胞感染慢病毒后，为什么荧光强度很弱?

较为常用的方法有鼻内滴注法、气管插管术气管内注射，如果对肺部感染AAV的特异性要求较低，也可采用静脉注射、腹腔注射等方法。

什么是过表达细胞系？

目前最常用的腺病毒包装体系有AdEasy和AdMAX两种，这两个系统均具有腺病毒早期转录复制基因E1和E3的缺陷（△E1，△E3），其中E3基因对病毒产生并非必需因此，腺病毒包装必需依赖表达E1的细胞系，例如HEK-293，HEK-293A等。腺病毒包装最好使用293A，不要用293T。

siRNA和shRNA的有什么区别？

慢病毒感染效率低有多种原因，比如某些原代细胞自身就比较难被感染（可以适当提高感染病毒量，或者采用多次感染法），细胞状态差也会影响病毒感染细胞效率，其次包装出来的病毒液尽量避免反复冻融（每次冻融会使病毒滴度降低10%~50%）。

什么情况下适合选用慢病毒载体呢？

收到病毒液后，如果能在一周内使用完毕可以将病毒液储存于4℃，如果试验周期长最好分装后储存于-80℃。另外，反复冻融会降低病毒滴度，而且病毒液储存时间超过6个月建议重新测定病毒滴度呦~

我养的小鼠原代T细胞，应该用什么病毒感染进行实验呢？

蛋白条带长度不一，为什么？